home *** CD-ROM | disk | FTP | other *** search
/ NetNews Usenet Archive 1992 #27 / NN_1992_27.iso / spool / sci / cryonics / 654 < prev    next >
Encoding:
Text File  |  1992-11-22  |  26.5 KB  |  503 lines

  1. Newsgroups: sci.cryonics
  2. Path: sparky!uunet!decwrl!parc!merkle
  3. From: merkle@parc.xerox.com (Ralph Merkle)
  4. Subject: The Technical Feasibility of Cryonics; part #4
  5. Message-ID: <merkle.722467022@manarken>
  6. Sender: news@parc.xerox.com
  7. Organization: Xerox PARC
  8. Date: 22 Nov 92 21:17:02 GMT
  9. Lines: 492
  10.  
  11. The Technical Feasibility of Cryonics
  12.  
  13. PART 4 of 5.
  14.  
  15. by
  16.  
  17. Ralph C. Merkle
  18. Xerox PARC
  19. 3333 Coyote Hill Road
  20. Palo Alto, CA 94304
  21. merkle@xerox.com
  22.  
  23. A shorter version of this article appeared in:
  24. Medical Hypotheses (1992)  39, pages 6-16.
  25.  
  26.  
  27. ----------------------------------------------------------
  28.      Determining the Healthy State
  29.  
  30. In the second phase of the analysis, determination of the healthy state, 
  31. we determine what the repaired (healthy) tissue should look like at the 
  32. molecular level.  That is, the initial structural data base produced by 
  33. the analysis phase describes unhealthy (frozen) tissue.  In 
  34. determination of the healthy state, we must generate a revised 
  35. structural data base that describes the corresponding healthy 
  36. (functional) tissue.   The generation of this revised data base requires 
  37. a computer program that has an intimate understanding of what healthy 
  38. tissue should look like, and the correspondence between unhealthy 
  39. (frozen) tissue and the corresponding healthy tissue.  As an example, 
  40. this program would have to understand that healthy tissue does not have 
  41. fractures in it, and that if any fractures are present in the initial 
  42. data base (describing the frozen tissue) then the revised data base 
  43. (describing the resulting healthy tissue) should be altered to remove 
  44. them.  Similarly, if the initial data base describes tissue with swollen 
  45. or non-functional mitochondria, then the revised data base should be 
  46. altered so that it describes fully functional mitochondria.  If the 
  47. initial data base describes tissue which is infected (viral or bacterial 
  48. infestations) then the revised data base should be altered to remove the 
  49. viral or bacterial components.
  50.  
  51. While the revised data base describes the healthy state of the tissue 
  52. that we desire to achieve, it does not specify the method(s) to be used 
  53. in restoring the healthy structure.  There is in general no necessary 
  54. implication that restoration will or will not be done at some specific 
  55. temperature, or will or will not be done in any particular fashion.  Any 
  56. one of a wide variety of methods could be employed to actually restore 
  57. the specified structure.  Further, the actual restored structure might 
  58. differ in minor details from the structure described by the revised data 
  59. base.
  60.  
  61. The complexity of the program that determines the healthy state will 
  62. vary with the quality of the suspension and the level of damage prior to 
  63. suspension.  Clearly, if cryonic suspension "almost works", then the 
  64. initial data base and the revised data base will not greatly differ.  
  65. Cryonic suspension under favorable circumstances preserves the tissue 
  66. with remarkable fidelity down to the molecular level.  If, however, 
  67. there was significant pre-suspension injury then deducing the correct 
  68. (healthy) structural description is more complex.  However, it should be 
  69. feasible to deduce the correct structural description even in the face 
  70. of significant damage.  Only if the structure is obliterated beyond 
  71. recognition will it be infeasible to deduce the undamaged state of the 
  72. structure.
  73.  
  74. ALTERNATIVES TO REPAIR
  75.  
  76. A brief philosophical aside is in order.  Once we have generated an 
  77. acceptable revised structural data base, we can in fact pursue either of 
  78. two distinctly different possibilities.  The obvious path is to continue 
  79. with the repair process, eventually producing healthy tissue.  An 
  80. alternative path is to use the description in the revised structural 
  81. data base to guide the construction of a different but "equivalent" 
  82. structure (e.g., an "artificial brain").  This possibility has been much 
  83. discussed[11, 50], and has recently been called "uploading" (or 
  84. "downloading")[26].  Whether or not such a process preserves what is 
  85. essentially human is often hotly debated, but it has advantages wholly 
  86. unrelated to personal survival.  As an example, the knowledge and skills 
  87. of an Einstein or Turing need not be lost:  they could be preserved in a 
  88. computational model.  On a more commercial level, the creative skills of 
  89. a Spielberg (whose movies have produced a combined revenue in the 
  90. billions) could also be preserved.  Whether or not the computational 
  91. model was viewed as having the same essential character as the 
  92. biological human after which it was patterned, it would indisputably 
  93. preserve that person's mental abilities and talents.
  94.  
  95. It seems likely that many people today will want complete physical 
  96. restoration (despite the philosophical possibilities considered above) 
  97. and will continue through the repair planning and repair phases.
  98.  
  99. RESTORATION
  100.  
  101. In the third phase of repair we start with an atomically precise 
  102. description (the revised data base) of the structure that we wish to 
  103. restore, and a filing cabinet holding the molecules that will be needed 
  104. during restoration.  Optionally, the molecules in the filing cabinet can 
  105. be from the original structure.  This deals with the concerns of those 
  106. who want restoration with the original atoms.  Our objective is to 
  107. restore the original structure with a precision sufficient to support 
  108. the original functional capabilities.  Clearly, this would be achieved 
  109. if we were to restore the structure with atomic precision.  Before 
  110. discussing this most technically exacting approach, we will briefly 
  111. mention the other major approaches that might be employed.
  112.  
  113. We know it is possible to build a human brain, for this has been done by 
  114. traditional methods for many thousands of years.  If we were to adopt a 
  115. restoration method that was as close as possible to the traditional 
  116. technique for building a brain, we might use a "guided growth" strategy.  
  117. That is, in simple organisms the growth of every single cell and of 
  118. every single synapse is determined genetically.  "All the cell 
  119. divisions, deaths, and migrations that generate the embryonic, then the 
  120. larval, and finally the adult forms of the roundworm Caenorhabditis 
  121. Elegans have now been traced."[103].  "The embryonic lineage is highly 
  122. invariant, as are the fates of the cells to which it gives rise"[102].  
  123. The appendix says:  "Parts List: Caenorhabditis elegans (Bristol) Newly 
  124. Hatched Larva.  This index was prepared by condensing a list of all 
  125. cells in the adult animal, then adding comments and references.  A 
  126. complete listing is available on request..."  The adult organism has 959 
  127. cells in its body, 302 of which are nerve cells[104].
  128.  
  129. Restoring a specific biological structure using this approach would 
  130. require that we determine the total number and precise growth patterns 
  131. of all the cells involved.  The human brain has roughly 10^12 nerve 
  132. cells, plus perhaps ten times as many glial cells and other support 
  133. cells.  While simply encoding this complex a structure into the genome 
  134. of a single embryo might prove to be overly complex, it would certainly 
  135. be feasible to control critical cellular activities by the use of on 
  136. board nanocomputers.  That is, each cell would be controlled by an on-
  137. board computer, and that computer would in turn have been programmed 
  138. with a detailed description of the growth pattern and connections of 
  139. that particular cell.  While the cell would function normally in most 
  140. respects, critical cellular activities, such as replication, motility, 
  141. and synapse growth, would be under the direct control of the on-board 
  142. computer.  Thus, as in C. Elegans but on a larger scale, the growth of 
  143. the entire system would be "highly invariant."  Once the correct final 
  144. configuration had been achieved, the on-board nanocomputers would 
  145. terminate their activities and be flushed from the system as waste.
  146.  
  147. This approach might be criticized on the grounds that the resulting 
  148. person was a "mere duplicate," and so "self" had not been preserved.  
  149. Certainly, precise atomic control of the structure would appear to be 
  150. difficult to achieve using guided growth, for biological systems do not 
  151. normally control the precise placement of individual molecules.  While 
  152. the same atoms could be used as in the original, it would seem difficult 
  153. to guarantee that they would be in the same places.
  154.  
  155. Concerns of this sort lead to restoration methods that provide higher 
  156. precision.  In these methods, the desired structure is built directly 
  157. from molecular components by placing the molecular components in the 
  158. desired locations.  A problem with this approach is the stability of the 
  159. structure during restoration.  Molecules might drift away from their 
  160. assigned locations, destroying the structure.
  161.  
  162. An approach that we might call "minimal stabilization" would involve 
  163. synthesis in liquid water, with mechanical stabilization of the various 
  164. lipid membranes in the system.  A three-dimensional grid or scaffolding 
  165. would provide a framework that would hold membrane anchors in precise 
  166. locations.  The membranes themselves would thus be prevented from 
  167. drifting too far from their assigned locations.  To prevent chemical 
  168. deterioration during restoration, it would be necessary to remove all 
  169. reactive compounds (e.g., oxygen).
  170.  
  171. In this scenario, once the initial membrane "framework" was in place and 
  172. held in place by the scaffolding, further molecules would be brought 
  173. into the structure and put in the correct locations.  In many instances, 
  174. such molecules could be allowed to diffuse freely within the cellular 
  175. compartment into which they had been introduced.   In some instances, 
  176. further control would be necessary.  For example, a membrane-spanning 
  177. channel protein might have to be confined to a specific region of a 
  178. nerve cell membrane, and prevented from diffusing freely to other 
  179. regions of the membrane.  One method of achieving this limited kind of 
  180. control over further diffusion would be to enclose a region of the 
  181. membrane by a diffusion barrier (much like the the spread of oil on 
  182. water can be prevented by placing a floating barrier on the water).
  183.  
  184. While it is likely that some further cases would arise where it was 
  185. necessary to prevent or control diffusion, the emphasis in this method 
  186. is in providing the minimal control over molecular position that is 
  187. needed to restore the structure.
  188.  
  189. While this approach does not achieve atomically precise restoration of 
  190. the original structure, the kinds of changes that are introduced 
  191. (diffusion of a molecule within a cellular compartment, diffusion of a 
  192. membrane protein within the membrane) would be very similar to the kinds 
  193. of diffusion that would take place in a normal biological system.  Thus, 
  194. the restored result would have the same molecules with the same atoms, 
  195. and the molecules would be in similar (though not exactly the same) 
  196. locations they had been in prior to restoration.
  197.  
  198. To achieve even more precise control over the restored structure, we 
  199. might adopt a "full stabilization" strategy.  In this strategy, each 
  200. major molecule would be anchored in place, either to the scaffolding or 
  201. an adjacent molecule.  This would require the design of a stabilizing 
  202. molecule for each specific type of molecule found in the body.   The 
  203. stabilizing molecule would have a specific end attached to the specific 
  204. molecule, and a general end attached either to the scaffolding or to 
  205. another stabilizing molecule.  Once restoration was complete, the 
  206. stabilizing molecules would release the molecules that were being 
  207. stabilized and normal function would resume.  This release might be 
  208. triggered by the simple diffusion of an enzyme that attacked and broke 
  209. up the stabilizing molecules.  This kind of approach was considered by 
  210. Drexler[1].
  211.  
  212.      Low Temperature Restoration
  213.  
  214. Finally, we might achieve stability of the intermediate structure by 
  215. using low temperatures.  If the structure were restored at a 
  216. sufficiently low temperature, a molecule put in a certain place would 
  217. simply not move.  We might call this method "low temperature 
  218. restoration."
  219.  
  220. In this scenario, each new molecule would simply be stacked (at low 
  221. temperature) in the right location.  This can be roughly likened to 
  222. stacking bricks to build a house.  A hemoglobin molecule could simply be 
  223. thrown into the middle of the half-restored red blood cell.  Other 
  224. molecules whose precise position was not critical could likewise be 
  225. positioned rather inexactly.  Lipids in the lipid bi-layer forming the 
  226. cellular membrane would have to be placed more precisely (probably with 
  227. an accuracy of several angstroms).  An individual lipid molecule, having 
  228. once been positioned more or less correctly on a lipid bi-layer under 
  229. construction, would be held in place (at sufficiently low temperatures) 
  230. by van der Waals forces.  Membrane bound proteins could also be 
  231. "stacked" in their proper locations.  Because biological systems make 
  232. extensive use of self-assembly, it would not be necessary to achieve 
  233. perfect accuracy in the restoration process.  If a biological 
  234. macromolecule is positioned with reasonable accuracy, it would 
  235. automatically assume the correct position upon warming.
  236.  
  237. Large polymers, used either for structural or other purposes, pose 
  238. special problems.  The monomeric units are covalently bonded to each 
  239. other, and so simple "stacking" is inadequate.  If such polymers cannot 
  240. be added to the structure as entirely pre-formed units, then they could 
  241. be incrementally restored during assembly from their individual monomers 
  242. using the techniques discussed earlier involving positional synthesis 
  243. using highly reactive intermediates.  Addition of monomeric units to the 
  244. polymer could then be done at the most convenient point during the 
  245. restoration operation.
  246.  
  247. The chemical operations required to make a polymer from its monomeric 
  248. units at reduced temperatures are unlikely to use the same reaction 
  249. pathways that are used by living systems.  In particular, the activation 
  250. energies of most reactions that take place at 310 K (98.6 degrees 
  251. Fahrenheit) can not be met at 77 K: most conventional compounds don't 
  252. react at that temperature.  However, as discussed earlier, assembler 
  253. based synthesis techniques using highly reactive intermediates in near-
  254. perfect vacuum with mechanical force providing activation energy will 
  255. continue to work quite well, if we assume that thermal activation energy 
  256. is entirely absent (e.g., that the system is close to 0 kelvins).
  257.  
  258. An obvious problem with this approach is the need to re-warm the 
  259. structure without incurring further damage.   Much "freezing" injury 
  260. takes place during rewarming, and this would have to be prevented.  One 
  261. solution is discussed in the next two paragraphs.
  262.  
  263. Generally, the revised structural data base can be further altered to 
  264. make restoration easier.  While certain alterations to the structural 
  265. data base must be banned (anything that might damage memory, for 
  266. example) many alterations would be quite safe.  One set of safe 
  267. alterations would be those that correspond to real-world changes that 
  268. are non-damaging.  For example, moving sub-cellular organelles within a 
  269. cell would be safe - such motion occurs spontaneously in living tissue.  
  270. Likewise, small changes in the precise physical location of cell 
  271. structures that did not alter cellular topology would also be safe.   
  272. Indeed, some operations that might at first appear dubious are almost 
  273. certainly safe.  For example, any alteration that produces damage that 
  274. can be repaired by the tissue itself once it is restored to a functional 
  275. state is in fact safe - though we might well seek to avoid such 
  276. alterations (and they do not appear necessary).   While the exact range 
  277. of alterations that can be safely applied to the structural data base is 
  278. unclear, it is evident that the range is fairly wide.
  279.  
  280. An obvious modification which would allow us to re-warm the structure 
  281. safely would be to add cryoprotectants.  Because we are restoring the 
  282. frozen structure with atomic precision, we could use different 
  283. concentrations and different types of cryoprotectants in different 
  284. regions, thus matching the cryoprotectant requirements with exquisite 
  285. accuracy to the tissue type.  This is not feasible with present 
  286. technology because cryoprotectants are introduced using simple diffusive 
  287. technniques.
  288.  
  289. Extremely precise control over the heating rate would also be feasible, 
  290. as well as very rapid heating.  Rapid heating would allow less time for 
  291. damage to take place.  Rapid heating, however, might introduce problems 
  292. of stress and resulting fractures.  Two approaches for the elimination 
  293. of this problem are (1) modify the structure so that the coefficient of 
  294. thermal expansion is very small and (2) increase the strength of the 
  295. structure.
  296.  
  297. One simple method of insuring that the volume occupied before and after 
  298. warming was the same (i.e., of making a material with a very small 
  299. thermal expansion coefficient) would be to disperse many small regions 
  300. with the opposite thermal expansion tendency throughout the material.  
  301. For example, if a volume tended to expand upon warming the initial 
  302. structure could include "nanovacuoles," or regions of about a nanometer 
  303. in diameter which were empty.   Such regions would be stable at low 
  304. temperatures but would collapse upon warming.  By finely dispersing such 
  305. nanovacuoles it would be possible to eliminate any tendency of even 
  306. small regions to expand on heating.  Most materials expand upon warming, 
  307. a tendency which can be countered by the use of nanovacuoles.
  308.  
  309. Of course, ice has a smaller volume after it melts.  The introduction of 
  310. nanovacuoles would only exacerbate its tendency to shrink upon melting.  
  311. In this case we could use vitrified H20 rather than the usual 
  312. crystalline variety.  H20 in the vitreous state is disordered (as in the 
  313. liquid state) even at low temperatures, and has a lower volume than 
  314. crystalline ice.  This eliminates and even reverses its tendency to 
  315. contract on warming.  Vitrified water at low temperature is denser than 
  316. liquid water at room temperature.
  317.  
  318. Increasing the strength of the material can be done in any of a variety 
  319. of ways.  A simple method would be to introduce long polymers in the 
  320. frozen structure.  Proteins are one class of strong polymer that could 
  321. be incorporated into the structure with minimal tissue compatibility 
  322. concerns.  Proteins of substantially greater length than naturally 
  323. existing proteins would be particularly effective at increasing 
  324. strength.  Any potential fracture plain would be criss-crossed by the 
  325. newly added structural protein, and so fractures would be prevented.  By 
  326. also including an enzyme to degrade this artificially introduced 
  327. structural protein, it would be automatically and spontaneously digested 
  328. immediately after warming.  Very large increases in strength could be 
  329. achieved by this method.
  330.  
  331. By combining (1) rapid, highly controlled heating with (2) atomically 
  332. precise introduction of cryoprotectants; (3) the addition of small 
  333. nanovacuoles and the use of vitrified H20 to reduce or eliminate thermal 
  334. expansion and contraction; and (4) the addition of structural proteins 
  335. to protect against any remaining thermally induced stresses; the damage 
  336. that might otherwise occur during rewarming should be completely 
  337. avoidable.
  338.  
  339.  
  340.  
  341. CONCLUSION
  342.  
  343. Cryonic suspension can transport a terminally ill patient to future 
  344. medical technology.  The damage done by current freezing methods is 
  345. likely to be reversible at some point in the future.  In general, for 
  346. cryonics to fail, one of the following "failure criteria" must be met:
  347.  
  348. 1.)  Pre-suspension and suspension injury would have to be sufficient to 
  349. cause information theoretic death.  In the case of the human brain, the 
  350. damage would have to obliterate the structures encoding human memory and 
  351. personality beyond recognition.
  352.  
  353. 2.)  Repair technologies that are clearly feasible in principle based on 
  354. our current understanding of physics and chemistry would have to remain 
  355. undeveloped in practice, even after several centuries.
  356.  
  357. An examination of potential future technologies[85] supports the 
  358. argument that unprecedented capabilities are likely to be developed.  
  359. Restoration of the brain down to the molecular level should eventually 
  360. prove technically feasible.  Off-board repair utilizing divide-and-
  361. conquer is a particularly simple and powerful method which illustrates 
  362. some of the principles that can be used by future technologies to 
  363. restore tissue.  Calculations support the idea that this method, if 
  364. implemented, would be able to repair the human brain within about three 
  365. years.  For several reasons, better methods are likely to be developed 
  366. and used in practice.
  367.  
  368. Off-board repair consists of three major steps:  (1) Determine the 
  369. coordinates and orientation of each major molecule.  (2) Determine a set 
  370. of appropriate coordinates in the repaired structure for each major 
  371. molecule.  (3)  Move them from the former location to the latter.  The 
  372. various technical problems involved are likely to be met by future 
  373. advances in technology.  Because storage times in liquid nitrogen 
  374. literally extend for several centuries, the development time of these 
  375. technologies is not critical.
  376.  
  377. A broad range of technical approaches to this problem are feasible.  The 
  378. particular form of off-board repair that uses divide-and-conquer 
  379. requires only that (1) tissue can be divided by some means (such as 
  380. fracturing) which does not itself cause significant loss of structural 
  381. information;  (2) the pieces into which the tissue is divided can be 
  382. moved to appropriate destinations (for further division or for direct 
  383. analysis); (3) a sufficiently small piece of tissue can be analyzed; (4) 
  384. a program capable of determining the healthy state of tissue given the 
  385. unhealthy state is feasible; (5) that sufficient computational resources 
  386. for execution of this program in a reasonable time frame are available; 
  387. and (6) that restoration of the original structure given a detailed 
  388. description of that structure is feasible.
  389.  
  390. It is impossible to conclude based on present evidence that either 
  391. failure criterion is likely to be met.
  392.  
  393. Further study of cryonics by the technical community is needed.  At 
  394. present, there is a remarkable paucity of technical papers on the 
  395. subject[ft. 22].  As should be evident from this paper multidisciplinary 
  396. analyis is essential in evaluating its feasibility, for specialists in 
  397. any single discipline have a background which is too narrow to encompass 
  398. the whole.  Given the life-saving nature of cryonics, it would be tragic 
  399. if it were to prove feasible but was little used.
  400.  
  401.  
  402. APPENDIX
  403.  
  404. Approximate values of interesting numbers.  Numbers marked by * are 
  405. extrapolations based on projected technical capabilities (nanotechnology 
  406. and molecular computing).
  407.  
  408.  
  409.  
  410. Volume of the brain:                     1350 cubic centimeters
  411. Weight of the brain:                     1400 grams
  412. Weight of proteins in the brain:         100 grams
  413. Weight of a ribosome:                    3 x 10^6 amu
  414. *Weight of a repair machine:             10^9 to 10^10 amu
  415.  
  416. *Length of a repair machine arm:         100 nanometers
  417. Weight of water in brain:                1100 grams
  418. Weight of protein in brain:              100 grams
  419. Weight of lipids in brain:               175 grams
  420. Weight of "other solids":                35 grams
  421.  
  422. Weight of "typical" protein:             50,000 amu
  423. Weight of "typical" lipid:               500 amu
  424. Weight of water molecule:                18 amu
  425. Weight of carbon atom:                   12 amu
  426. Density of carbon (diamond):             3.51 grams/cubic centimeter
  427.  
  428. Number of proteins in brain:             1.2 x 10^21
  429. Number of lipid molecules in brain:      2 x 10^23
  430. Number of water molecules in brain:      4 x 10^25
  431. Time to synthesize a protein:            10 seconds
  432. *Time to repair one protein molecule:    100 seconds
  433.  
  434. *Time to repair one lipid molecule:      1 second
  435. *Time to repair all brain macromolecules:3.2 x 10^23
  436.                                            repair-machine seconds
  437. *Number of repair machines to
  438.      repair all brain molecules in
  439.      three years:                        3.2 x 10^15 repair machines
  440. *Weight of that many repair devices:     53 to 530 grams
  441. Number of bits needed to store the
  442.      molecular structure of the brain:   10^25 bits
  443.  
  444. *Energy dissipated by a single "rod
  445.      logic" (gate) operation
  446.      (including a few percent
  447.      of irreversible operations):        10^-22 joules
  448. *Speed of a single "rod logic"
  449.      (gate) operation:                   100 x 10^-12 seconds
  450. Estimated cost of 10^15 joules of energy
  451.      generated on earth in the future:   10,000 dollars
  452. *Number of gate operations 10^15
  453.      joules can support:                 10^37 gate operations
  454. *Size of a single "lock" (gate)
  455.      plus overhead (power, etc):         100 cubic nanometers
  456.  
  457. *Volume of gates that can
  458.      deliver 10^37 operations in
  459.      three years (a larger volume will
  460.      in fact be required to accomodate
  461.      cooling requirements):              1 cubic centimeter
  462. Power of 10^15 joules dissipated
  463.      over a three year period:           10 megawatts (10^5 light bulbs
  464.                                              for three years)
  465. Chemical energy stored in the
  466.      structure of the brain:             8 x 10^6 joules (2,000 kilocalories)
  467.  
  468. Boltzman's constant k:                   1.38 x 10^-23 joules/Kelvin
  469. Approximate thermal energy of
  470.      one atom at room temperature
  471.      (kT at 300 degrees K):              4.14 x 10^-21 joules
  472. One watt:                                one joule per second
  473. One kilowatt hour:                       3.6 x 10^6 joules
  474. Avogadro's number (the number of
  475.      atoms in one mole):                 6.0221367 x 10^23
  476.  
  477. One mole of a substance:                 that quantity of the
  478.                                              substance that weighs
  479.                                              (in grams) the same as
  480.                                              its molecular weight
  481. amu (atomic mass units):                 By definition, one atom
  482.                                              of carbon 12 weighs
  483.                                              12 amu
  484. Joules per (dietary) Calorie:           4,186
  485.  
  486.  
  487.  
  488. ACKNOWLEDGEMENTS
  489.  
  490. It is the authors pleasant duty to acknowledge the many people who have 
  491. commented on or encouraged the work on this paper as it evolved.  The 
  492. reviewers were not selected because of their opinions about cryonics: 
  493. some support it, some don't, and some reserve final judgement.  While 
  494. the quality of the result could not have been achieved without their 
  495. help, the author must accept responsibility for any errors in the final 
  496. version.  The author would like to thank:  Dave Biegelsen, Arthur C. 
  497. Clarke, Mike Darwin, Thomas Donaldson, Eric Drexler, Greg Fahy, Steve 
  498. Harris, Leonard Hayflick, Hugh Hixon, Peter Mazur, Mark Miller, David 
  499. Pegg, Chris Peterson, Ed Regis, Paul Segall, Len Shar, Irwin Sobel, Jim 
  500. Southard, Jim Stevens and Leonard Zubkoff.
  501.  
  502.  
  503.